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當前位置:首頁產(chǎn)品中心生化檢測試劑盒-微量法微量法生化試劑盒BC0585-100T/48S蔗糖合成酶(SS)活性檢測試劑盒 微量法

蔗糖合成酶(SS)活性檢測試劑盒 微量法
產(chǎn)品簡介:

儲存條件
-20℃
中文名稱
蔗糖合成酶(SS)活性檢測試劑盒 微量法
有效期
6個月
單位
盒
英文名稱
Sucrose Synthetase(SS) Activity Assay Kit
檢測方法
微量法 Spectrophotometer/Microplate Reader
規(guī)格
100T/48S

產(chǎn)品型號:BC0585-100T/48S

更新時間:2025-08-26

廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :1090

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產(chǎn)品介紹

蔗糖合成酶(SS)
活性檢測試劑盒說明書

微量法
貨號:BC0585
規(guī)格:100T/48S
產(chǎn)品內(nèi)容:使用前請認真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

試劑名稱規(guī)格保存條件
提取液液體50 mL×1瓶2-8℃保存
試劑一液體2.5 mL×1瓶-20℃保存
試劑二粉劑10 mg×1支2-8℃保存
試劑三液體2 mL×1瓶2-8℃保存
試劑四液體25 mL×1瓶2-8℃保存
試劑五液體6 mL×1瓶2-8℃保存

溶液的配制:
試劑二:臨用前加1 mL水,配制成10 mg/mL蔗糖溶液,再將其用蒸餾水稀釋為500μg/mL備用。
產(chǎn)品說明:
蔗糖是源(葉片等)光合產(chǎn)物向“庫"器官運輸?shù)闹饕螒B(tài)。SS(EC 2.4.1.13)催化植物體內(nèi)游離果糖和葡萄糖合成蔗糖。
SS催化游離果糖與葡萄糖供體UDPG反應生成蔗糖,蔗糖與間*酚反應可呈現(xiàn)顏色變化,在480nm下有特征吸收峰,酶活力大小與顏色的深淺成正比。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計/酶標儀、水浴鍋、離心機、移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、研缽/勻漿器、冰。
操作步驟:
一、樣本處理(可適當調(diào)整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)
按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。   
二、測定步驟

  1. 分光光度計或酶標儀預熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至480nm,蒸餾水調(diào)零。

  2. 樣本測定(在1.5mL EP管中依次加入下列試劑):

試劑名稱(μL)測定管對照管標準管空白管
樣本  1010--
蒸餾水-454555
試劑一45---
試劑二--10-

 

  混勻,25℃準確水浴10min
試劑三15151515
沸水浴中煮沸10min左右(蓋緊,以防止水分散失),冷卻
試劑四210210210210
試劑五60606060

混勻,80℃水浴保溫20min,冷卻后,12000rpm常溫離心10min。吸取200μL上清液于微量玻璃比色皿或者96孔板中,在480nm下測定各管吸光值(標準管和空白管只做1-2管,每個測定管需要設定一個對照管)。
計算ΔA測=A測定管-A對照管,ΔA標=A標準管-A空白管。
三、SS活力單位的計算

  1. 按照蛋白濃度計算

單位定義:每 mg 組織蛋白每分鐘催化產(chǎn)生1µg 蔗糖定義為一個酶活力單位。
SS活性(U/mg prot)=(C標準管×V1×ΔA測÷ΔA標)÷(V1×Cpr)÷T=50×ΔA測÷ΔA標÷Cpr

  1. 按照樣本質(zhì)量計算

單位定義:每 g 組織每分鐘催化產(chǎn)生1µg 蔗糖定義為一個酶活力單位。
SS活性(U/g 質(zhì)量)=(C標準管×V1×ΔA測÷ΔA標)÷(W×V1÷V2)÷T=50×ΔA測÷ΔA標÷W
C標準管:標準管濃度,500µg/mL;V1:加入反應體系中樣本體積,0.01mL;V2:加入提取液體積,1mL;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本鮮重,g;T:反應時間,10min。
注意事項:
盡量在30min內(nèi)完成測定。
參考文獻:

  1. Schrader S, Sauter J J. Seasonal changes of sucrose-phosphate synthase and sucrose synthase activities in poplar wood (Populus× canadensis Moench ‘robusta’) and their possible role in carbohydrate metabolism[J]. Journal of Plant Physiology, 2002, 159(8): 833-843.

  2. Nomura T, Akazawa T. Enzymic mechanism of starch synthesis in ripening rice grains: VII. Purification and enzymic properties of sucrose synthetase[J]. Archives of biochemistry and biophysics, 1973, 156(2): 644-652.

  3. Pressey R., Potato sucrose synthetase: purification, properties, and changes in activity associated with maturation[J]. Plant physiology, 1969, 44(5): 759-764.

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