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AnnexinV Alexa Fluor488/PI凋亡檢測試劑盒
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AnnexinV Alexa Fluor488/PI凋亡檢測試劑盒
細胞凋亡早期改變發(fā)生在細胞膜表面,這些細胞膜表面的改變之一是磷脂酰絲氨酸(PS)從細胞膜內(nèi)轉(zhuǎn)移到細胞膜外,使 PS 暴露在細胞膜外表面。PS 是一種帶負電荷的磷脂,正常主要存在于細胞膜的內(nèi)面,在細胞發(fā)生凋亡時細胞膜上的這種磷脂分布的不對稱性被破壞而使 PS 暴露在細胞膜外。

產(chǎn)品型號:CA1040

更新時間:2025-08-25

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AnnexinV Alexa Fluor488/PI凋亡檢測試劑盒

產(chǎn)品簡介:
細胞凋亡早期改變發(fā)生在細胞膜表面,這些細胞膜表面的改變之一是磷脂酰絲氨酸(PS)從細胞膜內(nèi)轉(zhuǎn)移到細胞膜外,使 PS 暴露在細胞膜外表面。PS 是一種帶負電荷的磷脂,正常主要存在于細胞膜的內(nèi)面,在細胞發(fā)生凋亡時細胞膜上的這種磷脂分布的不對稱性被破壞而使 PS 暴露在細胞膜外。Annexin V 具有易于結(jié)合到磷脂類如 PS 的特性,對 PS 有高度的親和性。因此,該蛋白可充當(dāng)一敏感的探針檢測暴露在細胞膜表面的 PS。PS 轉(zhuǎn)移到細胞膜外不是凋亡所*的,也可發(fā)生在細胞壞死中。兩種細胞死亡方式間的差別是在凋亡的初始階段細胞膜是 完好的,而細胞壞死在其早期階段細胞膜的完整性就破壞了。因此,可以采用Annexin V與PI 雙染的方法,通過流式檢測細胞早期凋亡。

操作步驟:
1、細胞樣品的準(zhǔn)備:
a)對于貼壁細胞:小心收集細胞培養(yǎng)液到一離心管內(nèi)備用。用不含 EDTA 的胰酶消化細胞,細胞可以被輕輕
用移液管或槍頭吹打下來時,加入前面收集的細胞培養(yǎng)液,吹打下所有的貼壁細胞,并輕輕吹散細胞。再次
收集到離心管內(nèi)。1000rpm 左右離心 5min,沉淀細胞。對于特定的細胞,如果細胞無法*離心離心管底,
可以適當(dāng)延長離心時間或稍稍加大離心力。小心吸除上清,可以殘留約 50µl 左右的培養(yǎng)液,以避免吸走細胞。
加入約 1ml 4℃預(yù)冷的 PBS,重懸細胞,再次離心沉淀細胞,小心吸除上清;
b)對于懸浮細胞:1000rpm 左右離心 5min,沉淀細胞。對于特定的細胞,如果細胞無法*離心離心
管底,可以適當(dāng)延長離心時間或稍稍加大離心力。小心吸除上清,可以殘留約 50µl 左右的培養(yǎng)液,以避免
吸走細胞。加入約 1ml 4℃ 預(yù)冷的 PBS,重懸細胞,再次離心沉淀細胞,小心吸除上清;
2、用去離子水按 1:3 稀釋結(jié)合緩沖液(4ml 4x 結(jié)合緩沖液+12ml 去離子水);
3、用 1x 結(jié)合緩沖液重新懸浮細胞,調(diào)節(jié)其濃度為 1-5×106/ml;
4、取 100µl 的細胞懸液于 5ml 流式管中,加入 5µl Annexin V/Alexa Fluor 488 混勻后于室溫避光孵育 5 分鐘;
5、加入 10µl 20ug/ml 的碘化丙錠溶液(PI),并加 400µl PBS,立刻進行流式檢測。
實驗設(shè)計:
1、空白管:陰性對照組細胞,不加 Annexin V/Alexa Fluor 488,碘化丙錠溶液(PI)。用于調(diào)節(jié)電壓;
2、單染管:陽性對照組細胞,只加 Annexin V/Alexa Fluor 488。用于調(diào)節(jié)補償;
3、檢測管:處理的細胞,加 Annexin V/Alexa Fluor 488,碘化丙錠溶液(PI)。用空白管和單染管調(diào)節(jié)好電壓補償
后,獲得所需要的流式數(shù)據(jù)。
注意事項:
1、Annexin V 是與磷脂酰絲氨酸(PS)親和,而 PS 在不同種屬間沒差異。在正常細胞中,PS 只分布在細胞膜脂
質(zhì)雙層的內(nèi)側(cè),而在細胞凋亡早期,PS 由脂膜內(nèi)側(cè)翻向外側(cè);
2、低濃度胰酶消化,輕柔吹打貼壁細胞 2~3 次,離心機 4℃1000rpm 5min 離心,處理得當(dāng)?shù)脑挘让冈斐蓳p
傷可以控制在 5%以內(nèi),有對照組的情況下對實驗結(jié)果不會造成明顯影響。
3、先加PI 不僅染色是否每組都均勻充分很難判斷,而且 PI 本身對細胞也是有毒性的,對實驗結(jié)果影響會比胰
酶大,不建議這樣做;
4、Annexin V 是Ca 依賴的蛋白,所以不能加入 EDTA,防止 EDTA 螯合了 Ca 離子從而影響 Annexin V,進而影
響結(jié)果。
5、用流式檢測凋亡時,PI 受時間的影響很大,因標(biāo)記了 PI 后會加大細胞毒性,隨著時間延長會導(dǎo)致 PI 的染
色增加,特別是檢測早期凋亡時,如果時間延長除了會導(dǎo)致在流式細胞儀上的細胞分群差距加大外,誤差會明顯
加大。一般 PI 加上后立刻上機,然后在一個小時內(nèi)檢測完成。兩種方法都可以,但是按照我們操作步驟造成
的誤差會更小。

相關(guān)文獻:

《The establishment of clonally derived chicken embryonic fibroblast cell line (CSC) with high transfection efficiency and ability as a feeder cell》 作者:Ruifeng Zhao , Jing Jin , Xinyu Sun , Kai Jin , Man Wang , Mahmoud F. Ahmed , Qisheng Zuo , Yani Zhang ,Zhenhua Zhao , Guohong Chen , Bichun Li 期刊:Journal of cellular Biochemistry 影響因子:3.062 PMID:30076744
《Leukemia inhibitory factor promotes extracellular matrix synthesis in degenerative nucleus pulposus cells via MAPK-ERK1/2 signaling pathway》 作者:Hao Zhou,Jieliang Shen,Zhenming Hua,Xiaoming Zhong 期刊:Biochemical and Biophysical Research Communications 影響因子:2.705 PMID:30446227
 

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